C. Wu, Y.h. Duan, W. Tang, M.m. Li, X. Wu, G.c. Wang, W.c. Ye, G.x. Zhou, New Ursane-Type Triterpenoid Saponins From The Stem Bark Of Schefflera Heptaphylla, Fitoterapia, 2014, 92, 127-132.

octophylla, Phytochemistry, 1991b, 30 (7), 2349-2356.

31. Trần Văn Sung, C. Lavaud, A. Porzel, W. Steglich, G. Adam, Triterpenoids and their glycosides from the bark of Schefflera octophylla, Phytochemistry, 1992, 31(1), 227-231.

32. C. Wu, Y.H. Duan, M.M. Li, W. Tang, X. Wu, G.C. Wang, Triterpenoid saponins from the stem barks of Schefflera heptaphylla, Planta Medica, 2013, 79(14), 1348-1355.

33. C. Wu, Y.H. Duan, W. Tang, M.M. Li, X. Wu, G.C. Wang, W.C. Ye, G.X. Zhou, New ursane-type triterpenoid saponins from the stem bark of Schefflera heptaphylla, Fitoterapia, 2014, 92, 127-132.

34. S. Arya, I.D. Arya, T. Eriksson, Rapid multiplication of adventitious somatic embryos of Panax ginseng, Plant Cell Tissue and Organ Culture, 1993, 34, 157- 162.

35. Y.E. Choi, J.H. Jeong, C.K. Shin, Hormone-independent embryogenic callus production from ginseng cotyledons using high concentrations of NH4NO3 and progress towards bioreactor production. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 2003, 72(3), 229-235.

36. S. Zhou and D.C. Brown, High efficiency plant production of North American ginseng via somatic embryogenesis from cotyledon explants, Plant Cell Reports, 2006, 25(3), 166-173.

37. Y.L. Kim, K. Kim, O.R. Lee, D.C. Yang, High frequency of plant regeneration through cyclic secondary somatic embryogenesis in Panax ginseng. Journal Ginseng Research, 2012, 36(4), 442-448.

38. Vũ Thị Hiền, Vũ Quốc Luận, Nguyễn Phúc Huy, Nguyễn Bá Nam, Bùi Văn Thế Vinh, Thái Xuân Du, Dương Tấn Nhựt, Phát sinh phôi trực tiếp từ lá, cuống lá và thân rễ cây sâm Ngọc Linh (Panax vietnamensis Ha et Grushv.), Tạp chí Sinh học, 2014, 36(1), 277-282.

Có thể bạn quan tâm!

• Minh Họa Sự Tái Sinh Rễ Trực Tiếp Và Khảo Sát Hình Thái Giải Phẫu Rễ Tái Sinh Trực Tiếp
• Ảnh Hưởng Của Naa, Iba Đến Sự Phân Nhánh Rễ, Ở Môi Trường ½Ms, 21 Nsc.
• Diễn Biến Tăng Trưởng Sinh Khối Rễ Bất Định Theo Thời Gian, 7 – 49 Nsc.
• Nghiên cứu tạo, nhân phôi vô tính và rễ bất định cây ngũ gia bì chân chim Schefflera octophylla Lour. Harms - 21
• Nghiên cứu tạo, nhân phôi vô tính và rễ bất định cây ngũ gia bì chân chim Schefflera octophylla Lour. Harms - 22

Xem toàn bộ 180 trang tài liệu này.

39. Vũ Thị Hiền, Vũ Quốc Luận, Nguyễn Phúc Huy, Nguyễn Bá Nam, Nguyễn Thị Kim Loan, Nguyễn Thanh Sang, Vũ Thị Thủy, Nguyễn Hồng Hoàng, Thái Xuân Du, Dương Tấn Nhựt, Sử dụng kỹ thuật nuôi cấy lớp mỏng tế bào trong nghiên cứu quá trìmh phát sinh hình thái của cây sâm Ngọc Linh (Panax vietnamensis Ha et Grushv.) in vitro, Tạp chí Khoa học và Phát triển, 2015, 13(4), 657-664.

40. Mai Trường, Trần Thị Ngọc Hà, Phan Tường Lộc, Lê Tấn Đức, Trần Trọng Tuấn, Đỗ Đăng Giáp, Bùi Đình Thạch, Nguyễn Thị Thanh, Phạm Đức Trí, Nguyễn Đức Minh Hùng, Nguyễn Văn Kết, Trần Công Luận, Nguyễn Hữu Hổ, Nghiên cứu tạo và nhân phôi soma sâm Ngọc Linh (Panax vietnamensis Ha et Grushv.) trong môi trường lỏng, Tạp chí Khoa học và Phát triển, 2014, 12(7), 1085-1095.

41. J.Y. Zhang, H.J. Sun, I.J. Song, T.W. Bae, H.G. Kang, S.M. Ko, Y.I. Kwon,

I.W. Kim, J. Lee, S.Y. Park, P.O. Lim, Y.H. Kim, H.Y. Lee, Plant regeneration of Korean wild ginseng (Panax ginseng Meyer) mutant lines induced by γ- irradiation (60Co) of adventitious roots. Journal Ginseng Research. 2014, 38(3), 220-225.

42. Đỗ Mạnh Cường, Hoàng Thanh Tùng, Hoàng Đắc Khải, Vũ Quốc Luận,Vũ Thị Hiền, Trương Thị Bích Phượng, Dương Tấn Nhựt, Increasing the somatic embryogenesis frequency of Panax vietnamensis Ha et Grushv. by disinfection of leaf explant using nano silver and the addition of nano silver in culture medium, Vietnam Journal of Biotechnology, 2020, 18, 517-527.

43. Nguyễn Thị Ngọc Hương, Trần Hùng, Trương Thị Đẹp, Biến đổi hình thái trong phát sinh phôi soma thông qua nuôi cấy mô sẹo Tam thất hoang (Panax stipuleanatus H.T.Tsai et K.M.Feng), Tạp chí Công nghệ Sinh học, 2018, 16(2), 279-284.

44. X. Gao, C. Zhu, W. Jia, W. Gao, M. Qiu, Y. Zhang, P. Xiao, Induction and characterization of adventitious roots directly from the explants of Panax notoginseng, Biotechnology Letters, 2005, 27(22), 1771-1775.

45. Mai Trường, Trần Thị Ngọc Hà, Phan Tường Lộc, Lê Tấn Đức, Trần Trọng Tuấn, Đỗ Đăng Giáp, Bùi Đình Thạch, Nguyễn Thị Thanh, Phạm Đức Trí, Nguyễn Đức Minh Hùng, Nguyễn Văn Kết, Trần Công Luận, Nguyễn Hữu Hổ, Một số kết quả nghiên cứu tạo và nuôi rễ bất định sâm Ngọc Linh (Panax vietnamensis Ha et Grushv.), Tạp chí Công nghệ Sinh học, 2014, 12(2), 355- 364.

46. Nguyễn Thị Ngọc Hương, Trần Hùng, Trương Thị Đẹp, Tìm hiểu các biến đổi hình thái trong sự phát sinh rễ Tam thất hoang (Panax stipuleanatus H.T.Tsai et K.M.Feng) nuôi cấy in vitro và bước đầu định tính oleanolic acid trong rễ

tạo thành, Tạp chí Công nghệ Sinh học, 2016, 14(1), 49-54.

47. Nguyễn Thị Nhật Linh, Nghiên cứu nuôi cấy rễ thứ cấp sâm Ngọc Linh (Panax vietnamensis Ha et Grushv.) và khảo sát ảnh hưởng của một số elicitor lên sự tích lũy saponin, Luận án TS chuyên ngành Sinh lý học Thực vật (Mã số: 62.42.01.12), Trường ĐH Khoa học Huế - ĐH Huế, 2017.

48. Z. Gui, Z. Guo, S. Ke, R.M. Skirvin, Somatic embryogenesis and plant regeneration in Acanthopanax senticosus, Plant Cell Reports, 1991, 9(9), 514- 516.

49. Y.E. Choi, J.W. Kim, W.Y. Soh, Somatic embryogenesis and plant regeneration from suspension cultures of Acanthopanax koreanum Nakai, Plant Cell Reports, 1997, 17(2), 84-88.

50. S.Y. Park, J.K. Ahn, W.Y. Lee, H.N. Murthy, K.Y. Paek, Mass production of Eleutherococcus koreanum plantlets via somatic embryogenesis from root cultures and accumulation of eleutherosides in regenerants, Plant Science, 2005, 168(5), 1221-1225.

51. A.M. Shohael, H.N. Murthy, E.J. Hahn, K.Y. Paek, Methyl jasmonate induced overproduction of eleutherosides in somatic embryos of Eleutherococcus senticosus cultured in bioreactors. Electronic Journal of Biotechnology, 2007, 10(4), 633-637.

52. J.M. Seo, C.G. Shin, Y.E. Choi, Mass production of adventitious roots of Eleutherococcus sessiliflorus through the bioreactor culture, Journal of Plant Biotechnology, 2003, 5(3), 187-191.

53. E.J. Lee and K. Y. Paek, Effect of nitrogen source on biomass and bioactive compound production in submerged cultures of Eleutherococcus koreanum Nakai adventitious roots, Biotechnology Progress, 2012, 28(2), 508-514.

54. A. Sliwinska, O. Olszowska, M. Furmanowa, A. Nosov, Rapid multiplication of Polyscias filicifolia by secondary somatic embryogenesis, In vitro Cellular and Developmental Biology, Plant, 2008, 44(2), 69-77.

55. Trịnh Việt Nga, Nguyễn Đức Minh Hùng, Bùi Minh Trí, Ngô Thị Anh Khôi, Triệu Thị Bích, Phạm Thị Minh Tâm, Nguyễn Hữu Hổ, Nuôi nhân in vitro phôi vô tính cây Đinh lăng lá nhỏ (Polyscias fruticosa (L.) Harms) trên hệ thống nuôi cấy lỏng lắc, Tạp chí Nông nghiệp và Phát triển Nông thôn, 2019, 5, 25-34.

56. T.P. Murali, P.K. Rajeevan, K. Sheeja, V.V. Ranjan, In vitro propagation and improvement of foliage plants, Final Report, Department of Pomology and Floriculture, College of Horticulture, Kerala Agricultural University, Velhmikkara, India, 2000, 52 pages.

57. A.S. Misra, Micropropagation studies with some ornamental plants, PhD Thesis in Botany, Department of Botany, Faculty of Science, Maharaja Sayajirao University of Baroda, Vadodara, India, 2001, 390002.

58. Thuc Dinh Ngoc and Thanh Le Nguyen, Chemical composition and antimicrobial activity of essential oils from the leaves and stems of Schefflera arboricola (Hayata) Merr. collected in Vietnam. Journal of Essential Oil Bearing Plants, 2019, 22(5), 1401-1406.

59. O.R. Baghbidi and A. Jowkar, Micropropagation of dwarf Schefflera [Schefflera arboricola (Hayata) Merr.] via direct shoot regeneration. Advances in Horticultural Science, 2018, 32(2), 205-212.

60. B. Potduang, C. Chongsiriroeg, Y. Benmart, R. Giwanon, W. Supatanakul, S. Tanpanich, Biological activities of Schefflera leucantha, African Journal of Traditional, Complementary and Alternative Medicines, 2007, 4 (2), 157-164.

61. Y. Chirakiattikun and S. Prakaisrithongkham, Micropropagation of Schefflera leucantha, Thai Science and Technology Journal, 2004, 12(2), 34-40.

62. T.B.C. Da Silva, C.O. D’Sousa Costa, A.F.C. Galvao, L.M. Bomfim, A.B.C. Da C. Rodrigues, M.C.S. Mota, A.A. Dantas, T.R. Dos Santos, M.B.P. Soares,

D.P. Bezerra, Cytotoxic potential of selected medicinal plants in northeast Brazil, BMC Complementary and Alternative Medicine, 2016, 16(1), 199.

63. E.T.H Franco, L.B. Gavioli, A.G. Ferreira, In vitro regeneration of Didymopanax morototoni, Brazilan Journal Biology, 2006, 66(2A), 455-462.

64. G. Lloy and B. McCown, Commercially feasible micropropagation of moutain leurel, Kalmia latifolia, by use of shoot tip culture. Combined Proceedings - International Plant Propagator Society. Soc, 1980, 30(5), 421-427.

65. H.A. Méndez-Hernández, M. Ledezma-Rodríguez, R.N. Avilez-Montalvo, Y.L. Juárez-Gómez, A. Skeete, J. Avilez-Montalvo, C. De-la-Peđa, V.M. Loyola- Vargas, Signaling overview of plant somatic embryogenesis. Frontiers in Plant Science, 2019, 10,77.

137

66. A. Smertenko and P.V. Bozhkov, Somatic embryogenesis: life and death processes during apical-basal patterning, Jounal of Experimental Botany, 2014, 65 (5), 1343-1360.

67. A. Iantcheva, A. Barbulova, M. Vlahova, A. Atanassov, Primary asymmetric division and embryo formation in a single cell suspension of embryogenic Medicago falcata, Biotechnology and Biotechnological Equipment, 2004, 18(3), 27-33.

68. S. Von Arnold, I. Sabala, P. Bozhkov, J. Dyachok, L. Filonova, Developmental pathways of somatic embryogenesis, Plant Cell Tissue and Organ Culture, 2002, 69, 233-249.

69. S. Kadokura, K. Sugimoto, P. Tarr, T. Suzuki, S. Matsunaga, Characterization of somatic embryogenesis initiated from the Arabidopsis shoot apex, Developmental Biology, 2018, 442 (1), 13-27.

70. M. Zhang, A. Wang, M. Qin, X. Qin, S. Yang, S. Su, Y. Sun, L. Zhang, Direct and indirect somatic embryogenesis induction in Camellia oleifera Abel, Frontiers in Plant Science, 2021, 12, 644389.

71. L. Kharwanlang, MC. Das, S. Kumaria, P. Tandon, High frequency somatic embryos induction from the rhizome explant of Panax pseudoginseng Wall. using thin cell layer section. International Journal of Applied Biology and Pharmaceutical Technology, 2016a, 7(3), 32-40.

72. O.T. Kim, T.S. Kim, D.S. In, K.H. Bang, Y.C. Kim, Y.E. Choi, S.W. Cha, N.S. Seong, Optimization of direct somatic embryogenesis from mature zygotic embryo78s of Panax ginseng C.A. Meyer, Journal of Plant Biology, 2006, 49(5), 348-352.

73. Y.J. Kim, K. Kim, O.R. Lee, D.C. Yang, High frequency of plant regeneration through cyclic secondary somatic embryogenesis in Panax ginseng, Journal of Ginseng Research, 2012, 36(4), 442-448.

74. D.T. Nhut, B.V.T. Vinh, T.T. Hien, N.P. Huy, N.B. Nam, H.X. Chien, Effects of spermidine, proline and carbohydrate sources on somatic embryogenesis from main root transverse thin cell layers of Vietnamese ginseng (Panax vietnamensis Ha et. Grushv.), African Journal of Biotechnology, 2012, 11(5), 1084-1091.

138

75. A.H. Naing, C.K. Kim, B.J. Yun, J.Y. Jin, K.B. Lim, Primary and secondary somatic embryogenesis in Chrysanthemum cv. Euro. Plant Cell Tiss Organ Culture, 2013, 112, 361-368.

76. R. Zegzouti, M.F. Arnould, J.M. Favre, Histological investigation of the multiplication step in secondary somatic embryogenesis of Quercus robur L., Annals of Forest Science, 2001, 58(6), 681-690.

77. H.S.M. Khierallah and N.H. Hussein, The role of coconut water and casein hydrolysate in somatic embryogenesis of date palm and genetic stability detection using RAPD markers. Research in Biotechnology, 2013, 4(3), 20-28.

78. Tô Thị Nhã Trầm, Trương Phi Yến, Tôn Trang Ánh, Hoàng Thanh Tùng, Hà Thị Mỹ Ngân, Dương Tấn Nhựt, Phát sinh phôi soma cây đinh lăng lá xẻ nhỏ (Polyscias fruticosa L. Harms) thông qua nuôi cấy mẫu lá ex vitro, Tạp chí Công nghệ Sinh học, 2020, 18(3), 497-506.

79. G.I. Nic-Can and V.M. Loyola-Vargas, The role of the auxins during somatic embryogenesis, Somatic Embryogenesis: Fundamental Aspects and Applications, 2016, 171-181.

80. M.A. Abohatem, Y. Bakil, M. Baaziz, Plant regeneration from Somatic Embryogenic Suspension Cultures of Date Palm, Methods in Molecular Biology, 2017, 1637, 203-214.

81. T. Keshvari, A. Najaphy, D. Kahrizi, A. Zebarjadi, Callus induction and somatic embryogenesis in Stevia rebaudiana Bertoni as a medicinal plant, Cellular and Molecular Biology, 2018, 64(2), 46-49.

82. O. Novák and K. Ljung K, Zooming in on plant hormone analysis: tissueand cell-specific approaches, Annual review of Plant Biology, 2017, 68, 323-348.

83. X. Yang and X. Zhang, Regulation of somatic embryogenesis in higher plants.

Critical Reviews Plant Science, 2010, 29, 36-57.

84. R.E. Márquez-López, C.A. Pérez-Hernández, Á. Kú-González, R.M. Galaz- Ávalos, V.M. Loyola-Vargas, Localization and transport of indole-3-acetic acid during somatic embryogenesis in Coffea canephora. Protoplasma, 2018, 255, 695-708.

85. B. Jones, S.A. Gunneras, S.V. Petersson, P. Tarkowski, N. Graham, S. May, K. Dolezal, G. Sandberg, K.Ljung, Cytokinin regulation of auxin synthesis in

139

Arabidopsis involves a homeostatic feedback loop regulated via auxin and cytokinin signal transduction, Plant Cell, 2010, 22(9), 2956-2969.

86. V. M. Loyola-Vargas and N. Ochoa-Alejo, Somatic Embryogenesis. An Overeview, Somatic Embryogenesis: Fundamental Aspects and Applications, 2016, 1-8.

87. D. Leljak-Levanic, S. Mihaljevic, and N. Bauer, Somatic and zygotic embryos share common developmental features at the onset of plant embryogenesis. Acta Physiologiae Plantarum, 2015, 37, 1-14.

88. L. Michalczuk, T.J. Cooke, J.D. Cohen, Auxin levels at different stages of carrot somatic embryogenesis, Phytochemistry, 1992, 31, 1097-1103.

89. D.M. Ribnicky, N. IliC, J.D. Cohen, T.J. Cooke, The effects of exogenous auxins on endogenous indole-3-acetic acid metabolism - The implications for carrot somatic embryogenesis, Plant Physiol, 1996, 112, 549-558.

90. B. Ayil-Gutiérrez, R.M. Galaz-Ávalos, E. Peđa-Cabrera, V.M. Loyola-Vargas, Dynamics of the concentration of IAA and some of its conjugates during the induction of somatic embryogenesis in Coffea canephora, Plant Signaling & Behavior, 2013, 8, e26998.

91. H.H. Chung, J.T. Chen, W.C. Chang, Plant regeneration through direct somatic embryogenesis from leaf explants of Dendrobium. Biologia Plantarum, 2007, 51, 346-350.

92. W.P. Gow, J.T. Chen, W.C. Chang, Effects of genotype, light regime explants possion and orientation on direct somatic embryogenesis from leaf explants of Phalaenopsis orchids, Acta Physiologiae Plantarum, 2009, 31(2), 363-369.

93. C.S. Raju, A. Aslam, K. Kathiravan, P. Palani, A. Shajahan, Direct somatic embryogenesis and plant regeneration from leaf sheath explants of mango ginger (Curcuma amada Roxb.), In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant, 2014, 50, 752-759.

94. Y. Wang, F. Chen, Y. Wang, X. Li, H. Liang, Plant regeneration from immature

embryos of Tapiscia sinensis Oliv., an endemic and endangered species in China, Hortscience, 2014, 49(12), 1558-1562.

95. Bùi Văn Thế Vinh, Vũ Thị Thủy, Thái Thương Hiền, Đỗ Khắc Thịnh, Dương Tấn Nhựt, Nghiên cứu hình thái giải phẫu và cấu trúc phôi trong quá trình phát

140

sinh phôi vô tính sâm Ngọc Linh (Panax vietnamensis Ha et Grushv.), Tạp chí Khoa học và Phát triển, 2014, 7, 1140-1148.

96. H.J. Shen, J.T. Chen, H.H. Chung, W.C. Chang, Plant regeneration via direct somatic embryogenesis from leaf explants of Tolumnia Louise Elmore ‘Elsa’. Botanical Studies, 2018, 59, 4.

97. H. Liang, Y. Xiong, B. Guo, H. Yan, S. Jian, H. Ren, X. Zhang, Y. Li, S. Zeng,

K. Wu, F. Zheng, J.A. Teixeira da Silva, Y. Xiong, G. Ma, Shoot organogenesis and somatic embryogenesis from leaf and root explants of Scaevola sericea. Scientific Reports, 2020, 10, 11343.

98. E. Rahmat and Y. Kang, Adventitious root culture for secondary metabolite production in medicinal plants, A Review, Journal of Plant Biotechnology, 2019, 46(3), 143-157.

99. J. Yu, W. Liu, J. Liu, P. Qin, L. Xu, Auxin control of root organogenesis from callus in tissue culture, Frontiers in Plant Science, 2017, 8, 1835.

100. X.H. Cui, H.N. Murthy, C.H. Wu, K.Y. Paek, Sucrose-induced osmotic stress affects biomass, metabolite, and antioxidant levels in root suspension cultures of Hypericum perforatum L., Plant Cell Tissue and Organ Culture, 2010, 103, 7-14.

101. A.H. Ahkami, M. Melzer, M.R. Ghaffari, S. Pollmann, M.G. Javid, F. Shahinnia, M.R. Hajirezaei, U. Druege, Distribution of indole-3-acetic acid in Petunia hybrida shoot tip cuttings and relationship between auxin transport, carbohydrate metabolism and adventitious root formation, Planta, 2013, 238, 499–517.‌

102. L. Guan, R. Tayengwa, Z. Cheng, W.A. Peer, A.S. Murphy, M. Zhao, Auxin regulates adventitious root formation in tomato cuttings, Plant Biology, 2019, 19, 435.

103. K.H. Lo, Factor affecting shoot organogenesis in leaf disc culture of African violet, Scientia Hoticulturae, 1997, 72(1), 49-57.

104. R.J. Rose, X.D. Wang, K.E. Nolan and B.G. Rolfe, Root meristems in Medicago truncatula tissue culture arise from vascular-derived procambial-like cells in a process regulated by ethylene, Journal of Experimental Botany, 2006, 57(10), 2227-2235.